Aula Prática 3 – Coloração nuclear de embriões de galinha (2-3 dias) e a sua observação em microscopia de fluorescência

4 Abril 2023, 13:00 João Picão Osório

Desenvolvimento do embrião de galinha (Gallus gallus domesticus) II.

Objectivo 1: Processamento dos embriões da aula anterior para coloração nuclear.

Objectivo 2: Montagem dos embriões para serem observados num microscópio de fluorescência.

Objectivo 3:  Observação dos embriões no microscópio e captação de imagens.

Protocolo

1.    Calçar luvas e colocar os tubos com embriões de galinha da aula anterior num suporte para tubos.

2.    Na HOTTE, retirar o fixador (4% PFA em PBS; tóxico) dos tubos utilizando uma pipeta Pasteur com ponta fina (marcada LIXO) e despejar o fixador no contentor do líxo tóxico líquido.

3.    Encher o tubo até 2/3 do volume total com PBS e saír da hotte.

4.    Deixar lavar em PBS durante 10 min com agitação. Retirar o PBS com uma pipeta Pasteur de ponta fina (marcada LIXO) e deitar o líquido no tubo do líxo líquido na sua bancada. Colocar PBS novo e lavar com agitação outros 10 min. Repetir uma terceira vez.

5.    Depois da terceira lavagem colocar os embriões numa caixa de Petri com PBS e retirar o máximo das membranas extraembrionárias usando piças e a tesoura. Voltar a pôr os embriões no tubo com PBS.

6.    Na HOTTE e usando uma micropipeta, colocar 200 μl do corante nuclear DAPI (5 μg/ml em PBS; tóxico) no tubo e incubar no escuro durante 2 min.

7.    Na HOTTE retirar o DAPI com a micropipeta e colocar no tubo marcado “Lixo DAPI”. Encher os tubos com os embriões até 2/3 do volume total com PBS e saír da hotte.

8.    Deixar lavar em PBS durante 10 min com agitação. Retirar o PBS com uma pipeta Pasteur de ponta fina (marcada LIXO) e deitar o líquido no tubo do líxo líquido na sua bancada. Colocar PBS novo e lavar outros 10 min.

9.    Preparar uma caixa de Petri por grupo com 1% bactoagar em água a cobrir o fundo. Transferir os melhores embriões de cada estádio para esta caixa e, com as pinças, orientá- los da melhor maneira para a posterior captação de imagens. Retirar o excesso de PBS para que os embriões fiquem pousados em cima do agar. Escrever no lado da caixa o estádios HH dos embriões na caixa e indicar os vossos nomes/turma. No caderno, fazer um desenho da caixa indicando a posição e o estádio HH de cada embrião. Se tiverem muitos embriões bons, podem preparar uma segunda caixa.

Levar a caixa de Petri com os embriões para a Unidade de Microscopia (sala 2.1.15; https://fculmf.campus.ciencias.ulisboa.pt/) e observa-los utilizando a lupa de fluorescência (LUMAR) ou os microscópios de fluorescência (BX60 ou BX61). Faz aquisição de imagens com ajuda do técnico, Luís Marques