Sumários
Genómica 1
7 Outubro 2020, 10:00 • Maria Helena Machado Trindade de Donato
Métodos Biomoleculares utilizados na Genómica. Revisão de alguns conceitos: De onde provém a variabilidade do genoma, com particular destaque para SNPs e InDel. A sequenciação pelo método Sanger e novas plataformas de sequenciação de genomas (NGS): Roche 454, Illumina e Nanopore; principais diferenças entre os vários métodos de sequenciação, vantagens e desvantagens de cada uma delas.
Genómica 1
7 Outubro 2020, 09:00 • Maria Helena Machado Trindade de Donato
Métodos Biomoleculares utilizados na Genómica. Revisão de alguns conceitos: De onde provém a variabilidade do genoma, com particular destaque para SNPs e InDel. A sequenciação pelo método Sanger e novas plataformas de sequenciação de genomas (NGS): Roche 454, Illumina e Nanopore; principais diferenças entre os vários métodos de sequenciação, vantagens e desvantagens de cada uma delas.
TP Aplicações e exemplos da citometria de fluxo na biologia molecular e celular.
2 Outubro 2020, 09:00 • Rita Zilhão
Aula em formato zoom. Aplicações e exemplos da citometria de fluxo na biologia molecular e celular. Estudos de função celular (diferenciação, proliferação, apoptose). Diferenciação celular: análise do estado de activação das células, identificação de antigénios de superfície e intracelulares (vias de sinalização). Proliferação: análise da divisão celular (CFSE e VP450) e análise do ciclo celular (iodeto de propídio e BRdU). Apoptose (iodeto de propídio, anexina V). Deteção de células vivas vs mortas. Marcação intracelular. Deteção intracelular de espécies reativas de oxigénio (ROX). Tecnologias associadas à citometria de fluxo: sorteamento celular, Multiplex bead arrays, Amnis Image Stream, CyTOF, Single cell genomics, deteção de RNA (SmartFlare live cell detection e PrimeFlow RNA assay).
Aplicações e exemplos da citometria de fluxo na biologia molecular e celular
2 Outubro 2020, 08:00 • Rita Zilhão
Aula em formato zoom. Aplicações e exemplos da citometria de fluxo na biologia molecular e celular. Estudos de função celular (diferenciação, proliferação, apoptose). Diferenciação celular: análise do estado de activação das células, identificação de antigénios de superfície e intracelulares (vias de sinalização). Proliferação: análise da divisão celular (CFSE e VP450) e análise do ciclo celular (iodeto de propídio e BRdU). Apoptose (iodeto de propídio, anexina V). Deteção de células vivas vs mortas. Marcação intracelular. Deteção intracelular de espécies reativas de oxigénio (ROX). Tecnologias associadas à citometria de fluxo: sorteamento celular, Multiplex bead arrays, Amnis Image Stream, CyTOF, Single cell genomics, deteção de RNA (SmartFlare live cell detection e PrimeFlow RNA assay).
TP de Técnicas de obtenção de organismos transgénicos
30 Setembro 2020, 10:00 • Rita Zilhão
Técnicas de obtenção de organismos transgénicos. O que é um organismo transgénico, objectivos da sua construção e suas aplicações. Como se geram animais transgénicos – a escolha do transgene, as estratégias da construção molecular e a expressão do transgene. A inserção aleatória, os efeitos de posição e gene targeting. Estratégias de seleção de inserção em locais específicos. Sistemas de expressão induzíveis (Tet ON/Tet OFF) e condicionais (os sistemas Cre/loxP e FLP/FRT). Modificação dirigida de genomas através de nucleases específicas: ZFNs e TALENs. As células alvo na construção de um transgénico. Métodos de transferência génica. Organismos founder e os cruzamentos necessários para a obtenção do transgene. Confirmação da obtenção de um transgene. Transgénicos em diferentes modelos animais (ratinho, galinha, zebrafish). Preocupações éticas.